核提取物的制备实验-基本方案

1a.  收集转瓶培养的细胞:将浓度为5~10×108细胞/l 的培养液用1 L 的塑料瓶1 850 g 离心20 min,将细胞收入50 ml 锥形离心管中(每管收2~3 L 培养液中的细胞)。进行步骤2。
 
1b.  收集单层培养的细胞:单层细胞长满后去掉培养液。用PBS洗1次。将细胞刮入新鲜PBS液里,倒进锥形离心管中。进行步骤2。

2.  1 850 g 离心10 min。
 
3a.  转瓶培养细胞:测量压紧后细胞的体积。将细胞重悬于约5倍于其pcv的PBS液中,1 850 g 离心10 min。进行步骤4。

3b.  单层培养细胞:测量pcv,进行步骤4。

4.  快速地将沉淀的细胞重悬于5倍体积的低渗缓冲液中,1 850 g 离心10 min。将细胞沉淀重悬于3倍于原pcv的低渗缓冲液中,放置在冰上10 min,让细胞肿胀。
 
5.  在Dounce氏玻璃匀浆器中用B号研杵缓馒上下抽提10次以上。用台盼蓝染色排斥法在显微镜下检査细胞裂解滑况(应大于80%~90%)。

6.  3 300 g 离心15 min,保留上清用来制备S-100细胞质提取物。

7.  测量第6步离心沉淀的压紧后的细胞核体积。用1/2 pnv体积的低盐缓冲液重悬细胞核(必要时用Dounce氏玻璃匀浆器匀浆一次)。

8.  在轻轻搅拌的同时,逐滴加入1/2 pnv体积的高盐缓冲液。终浓度应约为300 mmol/l。
 
9.  25 000 g 离心30 min,测量核提取物的电导率(用上请,见步骤10)。

10.  将核提取物加入透析管中,在50倍体积的透析液中进行透析,直到提取物的电导率和透析液一致为止(当提取物的KCl浓度达到100 mmol/l 时)。尽量缩短透析时间。
 
11.  将提取物从透析袋中移出45 000 g 离心20 min。
 
12.  用Bradford分析法测定上清中蛋白质的浓度。分装,浸入液氮中速冻,- 80℃保存。
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